熱線：021-66110819,13564362870
Email：info@vizai.cn
結果
葡萄漿果的內部氧分布
在霞多麗中，[O 2]從表皮向中果皮內部減少，在2.2-4毫米深度處達到低濃度（圖1）。該的最小[O 2深度范圍內]為5.5±5.5μmol l–1。然而，隨著進一步向漿果中心軸滲透，[O 2]增加并在7毫米深度處達到最大值（圖1）。為了測試[O 2]分布是否受到引入的O影響，2的通過滲透部位N 2在測量過程中將氣體輕輕施加到傳感器的入口點。的[O 2對照和氮處理漿果]分布相似（圖1），表明通過滲透部位的泄漏不會影響記錄的分布。
成熟過程中內部氧譜的變化和細胞死亡的進展
為了揭示CD的進展與漿果內缺氧之間是否存在聯系，我們使用FDA染色確定了CD，并記錄[O 2了同一天采樣的漿果的]剖面。類似的[O 2 Chardonnay和Ruby Seedless（中觀察到]分布圖2A、C）以及Shiraz在前1.5毫米（圖2E），但，[O 2隨著成熟的進行]在整個果皮上下降得更陡峭在所有品種中，導致整個[O總體較低2漿果的]。這表現為最低[O低得多2最后成熟階段采樣的]：霞多麗0μmol l–1、紅寶石無籽14.9±8.86μmol l–1和設拉子0μmol l–1。由于無法在設拉子漿果中看到種子，因此微型氧傳感器無法移入漿果中超過約1.6毫米，而不會危及傳感器的完整性（圖2E）。然而，很明顯，[O 2]急劇下降到1毫米（圖2E）。
圖2
[O2]霞多麗、紅寶石無核和設拉子漿果（A、C、E）在不同成熟階段的[O2]剖面圖以及每個品種（B、D、F）果皮中活組織(LT)的相應示例。(A)霞多麗漿果在2015-2016季節的DAA為87、104和136時采樣。雙向方差分析（重復）顯示，深度占總變異的46.7%（P<0.0001），時間占總變異的29.9%（P<0.0001），交互作用占總變異的8.0%（P=0.058））。水平虛線表示室溫下Millipore水的近似O2飽和值，與測量時的漿果相同。(B)用FDA染色的內側縱向切片（霞多麗），突出了不同成熟階段的LT差異（對應于A）。(C)2016-2017季節在91和132 DAA下采樣的Ruby無核漿果的[O2]配置文件。雙向方差分析（重復）顯示深度占總變異的85.2%（P<0.0001），時間占總變異的1.2%（P=0.0025），交互作用占總變異的3.7%（P=0.048））。(D)Ruby Seedless的LT在兩個相應的采樣日接近100%。(E)2014-2015季節在85和114 DAA上采樣的設拉子漿果的[O2]配置文件。插圖顯示了1.5毫米的輪廓細節。雙向方差分析（重復）顯示，深度占總變異的40.9%（P=0.0005），時間占總變異的19.6%（P<0.0001），交互作用占總變異的6.4%（P=0.43））。(F)設拉子的LT。數據是平均值±SE，對于(A)、(C)和(E)，n=3。
[O 2]霞多麗、紅寶石無核和設拉子漿果（A、C、E）在不同成熟階段的概況以及每個品種（B、D、F）果皮中活組織（LT）的相應示例。(A)霞多麗漿果在2015-2016季節的DAA為87、104和136時采樣。雙向方差分析（重復）顯示，深度占總變異的46.7%（P<0.0001），時間占總變異的29.9%（P<0.0001），交互作用占總變異的8.0%（P=0.058）。水平虛線表示的近似O 2室溫下Millipore水飽和值，與測量時的漿果相同。(B)用FDA染色的內側縱向切片（霞多麗），突出了不同成熟階段的LT差異（對應于A）。(C)[O 2 2016-2017季節在91和132 DAA下采樣的紅寶石無核漿果的]概況。雙向方差分析（重復）顯示深度占總變異的85.2%（P<0.0001），時間占總變異的1.2%（P=0.0025），交互作用占總變異的3.7%（P=0.048）。(D)Ruby Seedless的LT在兩個相應的采樣日接近100%。(E)[O 2 2014-2015季節在85和114 DAA上采樣的設拉子漿果的]概況。插圖顯示了1.5毫米的輪廓細節。雙向方差分析（重復）顯示深度占總變異的40.9%（P=0.0005），時間占總變異的19.6%（P<0.0001），交互作用占總變異的6.4%（P=0.43）。(F)設拉子的LT。數據是平均值±SE，，n對于(A)、(C)和(E)=3。
[O2]霞多麗、紅寶石無核和設拉子漿果（A、C、E）在不同成熟階段的[O2]剖面圖以及每個品種（B、D、F）果皮中活組織(LT)的相應示例。(A)霞多麗漿果在2015-2016季節的DAA為87、104和136時采樣。雙向方差分析（重復）顯示，深度占總變異的46.7%（P<0.0001），時間占總變異的29.9%（P<0.0001），交互作用占總變異的8.0%（P=0.058））。水平虛線表示室溫下Millipore水的近似O2飽和值，與測量時的漿果相同。(B)用FDA染色的內側縱向切片（霞多麗），突出了不同成熟階段的LT差異（對應于A）。(C)2016-2017季節在91和132 DAA下采樣的Ruby無核漿果的[O2]配置文件。雙向方差分析（重復）顯示深度占總變異的85.2%（P<0.0001），時間占總變異的1.2%（P=0.0025），交互作用占總變異的3.7%（P=0.048））。(D)Ruby Seedless的LT在兩個相應的采樣日接近100%。(E)2014-2015季節在85和114 DAA上采樣的設拉子漿果的[O2]配置文件。插圖顯示了1.5毫米的輪廓細節。雙向方差分析（重復）顯示，深度占總變異的40.9%（P=0.0005），時間占總變異的19.6%（P<0.0001），交互作用占總變異的6.4%（P=0.43））。(F)設拉子的LT。數據是平均值±SE，對于(A)、(C)和(E)，n=3。
活力染色（圖2B、F）表明，對于霞多麗和設拉子，CD隨著TSS的積累而隨時間增加，并且主要發生在中果皮的中部，對應于[O的最小值2]中。此外，霞多麗漿果赤道處熒光信號強度的變化顯示出與漿果內部[O相似的趨勢2]（圖3A 3A），表明細胞活力與內部[O）之間存在相關性2]（圖。3B)。另一方面，當TSS為20.7°Brix時，Ruby Seedless漿果在132 DAA下保持接近100%的細胞活力（圖2D）。雖然類似形狀的[O 2與霞多麗漿果的中果皮相比，在Ruby Seedless漿果的中果皮中觀察到]分布（圖圖2C），但[O 2]沒有達到零。
圖3
活組織熒光信號與[O2]分布之間的相關性。來自霞多麗(A)和Ruby Seedless(C)赤道半徑上的FDA染色（高值=較高的活組織）的熒光信號[相對灰度（%最大值）]。87和104 DAA上的霞多麗(B)和91和132 DAA(D)上的Ruby Seedless中相應深度（對數刻度）的熒光信號強度和[O2]之間的相關性（戴明回歸）（[O2]分布如圖2所示）。1）。數據是平均值±SE，n=3。
活組織熒光信號與[O之間的相關性2]分布。來自霞多麗(A)和Ruby Seedless(C)赤道半徑上的FDA染色（高值=較高的活組織）的熒光信號[相對灰度（%最大值）]。熒光信號強度與[O之間的相關性（戴明回歸）2 87和104 DAA上的霞多麗(B)和91和132 DAA上的Ruby Seedless(D)中相應深度（對數刻度）處的]（[O 2]分布如圖所示）圖1）。數據是平均值±SE，n=3。
活組織熒光信號與[O2]分布之間的相關性。來自霞多麗(A)和Ruby Seedless(C)赤道半徑上的FDA染色（高值=較高的活組織）的熒光信號[相對灰度（%最大值）]。87和104 DAA上的霞多麗(B)和91和132 DAA(D)上的Ruby Seedless中相應深度（對數刻度）的熒光信號強度和[O2]之間的相關性（戴明回歸）（[O2]分布如圖2所示）。1）。數據是平均值±SE，n=3。
盡管[O減少2在成熟過程中整個中果皮的]，對于霞多麗和紅寶石無核漿果，[O 2]開始隨著深度從~4.2毫米增加，并在霞多麗中達到最大~6.2毫米，在較大的中達到8.2毫米紅寶石無核漿果（圖2A、C）。相對于每個漿果復制品（的直徑標準化傳感器的位置圖4 4）表明，）的，[O 2在霞多麗（所有采樣時間]在中央維管束區域達到峰值圖4A）和Ruby Seedless（圖。4B)。
圖4
單個漿果[O2]配置文件歸一化為漿果半徑。(A)2015-2016季節在87、104和136 DAA采樣的霞多麗漿果的[O2]分布（平均數據如圖2所示）。(B)2016-2017季節在91和132 DAA下采樣的單個Ruby無核漿果的[O2]配置文件。
單個漿果[O 2]配置文件歸一化到漿果半徑。(A)[O 2 2015-2016季節在87、104和136 DAA采樣的霞多麗漿果的]分布（平均數據如圖所示圖2）。(B)[O 2 2016-2017季節在91和132 DAA下采樣的單個紅寶石無核漿果的]概況。
單個漿果[O2]配置文件歸一化為漿果半徑。(A)2015-2016季節在87、104和136 DAA采樣的霞多麗漿果的[O2]分布（平均數據如圖2所示）。(B)2016-2017季節在91和132 DAA下采樣的單個Ruby無核漿果的[O2]配置文件。
葡萄漿果內氧氣的消耗和供應途徑
考慮到CD和[O之間的聯系2]（圖3），以及發育良好的Ruby Seedless漿果中缺乏CD（圖2D），我們研究了種子對霞多麗漿果呼吸需求的貢獻.種子鮮重在糖分積累和皮膚著色開始時達到峰值，此階段稱為veraison（Ristic和Iland，2005年多麗達），這里的霞到~63 DAA。按每克鮮重計算，此階段的種子呼吸比整個漿果的呼吸高5倍。與63 DAA相比，122 DAA的漿果呼吸減少了約三分之一（圖5A）；然而，種子呼吸減少了40倍（圖5B）。漿果質量幾乎翻了一番，從63 DAA時的7.2±0.5 g到122 DAA時的13.9±1.4 g；因此，在每個漿果的基礎上，呼吸速率從63 DAA增加到122 DAA，增加了約18%（圖5C）。漿果中種子總數的貢獻占veraison漿果呼吸需求的一半以上。這在122 DAA時下降到一個微不足道的比例（圖5C）。
圖5
2015-2016季節在63和122 DAA下的霞多麗漿果和種子呼吸（25°C）。漿果(A)和種子(B)以每克鮮重為基礎的呼吸作用。(C)基于每個漿果（包括種子）、總種子基礎和單種子基礎的呼吸速率比較。數據是平均值±SE，n=3。所有比率在63和122 DAA之間都不同（t檢驗，P<0.05）。
2015-2016季節在63和122 DAA下的霞多麗漿果和種子呼吸（25°C）。漿果(A)和種子(B)以每克鮮重為基礎的呼吸作用。(C)基于每個漿果（包括種子）、總種子基礎和單種子基礎的呼吸速率比較。數據是平均值±SE，n=3。所有比率在63和122 DAA之間都不同（t檢驗，P<0.05）。
2015-2016季節在63和122 DAA下的霞多麗漿果和種子呼吸（25°C）。漿果(A)和種子(B)以每克鮮重為基礎的呼吸作用。(C)基于每個漿果（包括種子）、總種子基礎和單種子基礎的呼吸速率比較。數據是平均值±SE，n=3。所有比率在63和122 DAA之間都不同（t檢驗，P<0.05）。
擴散到漿果中的阻力差異可能會影響[O 2]分布。花梗皮孔可能提供O的途徑，2進入這可以解釋朝向漿果中心軸的較高濃度。Chardonnay（之間的皮孔形態存在明顯差異圖6A）和Shiraz漿果（圖6B）。與設拉子漿果相比，霞多麗花梗上的單個皮孔更大，總表面積占花梗表面積的比例也大10倍（圖6C）。
圖6。
霞多麗(A)和設拉子(B)漿果花梗之間皮孔形態和相對皮孔面積的差異。(C)相對于霞多麗和設拉子漿果（室內種植，2015年）的花梗表面積，使用ImageJ估計的扁豆面積。(A)和(B)中的比例尺=1 mm。(C)中的數據是平均值±SE，n=5，*顯著不同（t檢驗，P<0.05）。
霞多麗(A)和設拉子(B)漿果花梗之間皮孔形態和相對皮孔面積的差異。(C)相對于霞多麗和設拉子漿果（室內種植，2015年）的花梗表面積，使用ImageJ估計的扁豆面積。(A)和(B)中的比例尺=1 mm。(C)中的數據是平均值±SE，n=5，*顯著不同（t檢驗，P<0.05）。
霞多麗(A)和設拉子(B)漿果花梗之間皮孔形態和相對皮孔面積的差異。(C)相對于霞多麗和設拉子漿果（室內種植，2015年）的花梗表面積，使用ImageJ估計的扁豆面積。(A)和(B)中的比例尺=1 mm。(C)中的數據是平均值±SE，n=5，*顯著不同（t檢驗，P<0.05）。
為了確定花梗上的皮孔是否可以作為漿果氣體交換的場所，對相同批次的漿果進行呼吸測量，這些漿果有或沒有用硅脂覆蓋的梗以阻礙氣體交換。這在20°C和40°C下進行了檢查，因為對O呼吸需求2的隨溫度增加（Hertog等人，1998年）。圖7A顯示，在40°C下用硅脂覆蓋漿果梗（和皮孔）可降低設拉子和霞多麗漿果在40°C下的漿果呼吸，但對20°C下的呼吸沒有影響。呼吸的溫度依賴性在霞多麗和西拉更詳細地進行了檢查，既產生相似的活化能和Q 10（補充圖S1，S2在JXB在線）沒有在兩天每個品種采樣漿果之間不同。覆蓋花梗的漿果的表觀呼吸減少并不是由于花梗呼吸的消除，因為40°C時的花梗呼吸速率是總漿果呼吸的一小部分（圖7B）并且沒有解釋減少當覆蓋花梗時觀察到（圖7A），其中花梗覆蓋的設拉子和霞多麗在40°C下的呼吸減少為839.7±101.8 nmol h–1和1233.9±229.4 nmol h–1每個漿果。
圖7
花梗在氧擴散中作為溫度的函數的作用。(A)霞多麗(86 DAA)和設拉子(77 DAA)漿果（每個漿果）在20°C和40°C下的呼吸，并附有花梗（2016-2017季節）。硅脂覆蓋花梗上的皮孔（覆蓋漿果）。在20°C下，兩個品種的對照和花梗覆蓋的漿果之間的表觀漿果呼吸沒有顯著差異。不同的小寫字母表示每個品種在40°C處理之間的顯著差異（雙向方差分析，P<0.0001）。Shiraz和Chardonnay在40°C時每個漿果的呼吸作用分別降低了839.7±101.8 nmol h-1和1377.3±161.3 nmol h-1（降低了26%和39%）。(B)整個漿果的呼吸速率，包括附著的花梗和霞多麗在40°C下的分離花梗的呼吸。花梗占整個漿果呼吸率的9%。數據是平均值±SE，n=3。
花梗在氧擴散中作為溫度的函數的作用。(A)霞多麗(86 DAA)和設拉子(77 DAA)漿果（每個漿果）在20°C和40°C下的呼吸作用，并附有花梗（2016-2017季節）。硅脂覆蓋花梗上的皮孔（覆蓋漿果）。在20°C下，兩個品種的對照和花梗覆蓋的漿果之間的表觀漿果呼吸沒有顯著差異。不同的小寫字母表示每個品種在40°C處理之間的顯著差異（雙向方差分析，P<0.0001）。Shiraz和Chardonnay降低了839.7±101.8 nmol h–1和1377.3±161.3 nmol h–1在40°C下的呼吸作用中，每個漿果的呼吸作用分別（降低了26%和39%）。(B)整個漿果的呼吸速率，包括附著的花梗和霞多麗在40°C下的分離花梗的呼吸。花梗占整個漿果呼吸率的9%。數據是平均值±SE，n=3。
花梗在氧擴散中作為溫度的函數的作用。(A)霞多麗(86 DAA)和設拉子(77 DAA)漿果（每個漿果）在20°C和40°C下的呼吸，并附有花梗（2016-2017季節）。硅脂覆蓋花梗上的皮孔（覆蓋漿果）。在20°C下，兩個品種的對照和花梗覆蓋的漿果之間的表觀漿果呼吸沒有顯著差異。不同的小寫字母表示每個品種在40°C處理之間的顯著差異（雙向方差分析，P<0.0001）。Shiraz和Chardonnay在40°C時每個漿果的呼吸作用分別降低了839.7±101.8 nmol h-1和1377.3±161.3 nmol h-1（降低了26%和39%）。(B)整個漿果的呼吸速率，包括附著的花梗和霞多麗在40°C下的分離花梗的呼吸。花梗占整個漿果呼吸率的9%。數據是平均值±SE，n=3。
[O快速減少2當N時，在距離花梗約2毫米和靠近紅寶石無核漿果的中心軸處觀察到]的2流在花梗上被激活（圖8）。
圖8
花梗在氣體擴散到Ruby Seedless葡萄中的作用（2016-2017季節為132 DAA）。三個單獨漿果的[O2]作為時間的函數，傳感器插入大約Ruby Seedless的中心軸，距花梗約2毫米。虛線表示在花梗上開始外部N2氣體輸送。不同的符號表示不同的漿果。插圖：在測量[O2]的同時在漿果花梗上施加N2氣體的實驗裝置。
花梗在氣體擴散到Ruby Seedless葡萄中的作用（2016-2017季節為132 DAA）。[O 2三個單獨漿果的]作為時間的函數，傳感器插入大約距離花梗約2 mm的Ruby Seedless的中心軸。虛線表示開始外部N 2在花梗上氣體輸送。不同的符號表示不同的漿果。插圖：施加N實驗裝置2在測量[O同時在漿果花梗上氣體的2]的。
花梗在氣體擴散到Ruby Seedless葡萄中的作用（2016-2017季節為132 DAA）。三個單獨漿果的[O2]作為時間的函數，傳感器插入大約Ruby Seedless的中心軸，距花梗約2毫米。虛線表示在花梗上開始外部N2氣體輸送。不同的符號表示不同的漿果。插圖：在測量[O2]的同時在漿果花梗上施加N2氣體的實驗裝置。
隨后使用生長箱培養的霞多麗葡萄藤進行了一項實驗，以測試覆蓋附著在葡萄藤上的漿果的花梗皮孔是否會影響內部[O 2]分布。用硅脂覆蓋漿果梗三天后[O減少，2，中央血管區域的]并保持在0μmol l附近–1在隨后的15天中（圖9A）。對于對照漿果，，[O的最大值2在所有天的測量中]在中心軸處很明顯。在這個實驗過程中，TSS的濃度隨著時間的推移而增加，并且對于皮孔覆蓋的漿果來說更高（圖9B）。糖/漿果不受覆蓋皮孔的影響（圖9C）。在覆蓋花梗皮孔后第12天和第20天測量漿果的乙醇濃度。與對照漿果相比，這些漿果顯示出更高的乙醇含量（圖9D），這與缺氧漿果內更多的發酵一致。通過在覆蓋皮孔10天后限制氧擴散，CD顯著增加（圖9E），這也從跨漿果的橫斷面檢查中明顯看出（圖9F）。
圖9
在成熟過程中用硅脂覆蓋漿果花梗對完整霞多麗簇的影響（2017年種植室，空心方塊=對照，實心圓圈=覆蓋）。(A)[O2]在漿果的近似中心軸上作為覆蓋花梗后時間的函數。雙向方差分析顯示覆蓋花梗減少了[O2](P<0.0001)。(B)覆蓋花梗后漿果的總可溶性固體(TSS)濃度隨時間的變化。與對照漿果相比，花梗覆蓋的漿果在實驗過程中顯示出顯著更高的TSS（雙向方差分析P=0.003；擬合為二階多項式，實線=對照，虛線=覆蓋）。(C)作為覆蓋花梗后時間的函數的每個漿果的糖分。糖/漿果處理之間沒有發現顯著差異（組合擬合是二階多項式，實線）。(D)12天和20天后漿果的乙醇濃度，有（填充）和沒有（開放）硅脂覆蓋花梗。雙向ANOVA（Tukey多重比較檢驗）在覆蓋后20 d顯示出顯著差異（P=0.036）。(E)作為時間函數的活組織百分比。覆蓋漿果的擬合線（虛線）的斜率不為零（P=0.008），并且不同于未覆蓋漿果的擬合線（實線）的斜率（P=0.006）。(F)赤道半徑上的熒光信號（FDA染色，相對于最大值，高值=較高的活組織）在覆蓋后14天和18天針對漿果直徑的變化進行標準化。每個都顯示了局部加權散點圖平滑擬合(LOWESS)。覆蓋（虛線）與對照（實線）在兩個時間點都顯著不同（雙向方差分析，P<0.001）。數據是平均值±SE，n=3，除了(F)未顯示SE。
在成熟過程中用硅脂覆蓋漿果花梗對完整霞多麗簇的影響（2017年種植室，空心方塊=對照，實心圓圈=覆蓋）。(A)[O 2]在漿果的近似中心軸上作為覆蓋花梗后時間的函數。雙向方差分析顯示覆蓋花梗減少[O 2](P<0.0001)。(B)覆蓋花梗后漿果的總可溶性固體(TSS)濃度隨時間的變化。與對照漿果相比，花梗覆蓋的漿果在實驗過程中顯示出顯著更高的TSS（雙向方差分析P=0.003；擬合為二階多項式，實線=對照，虛線=覆蓋）。(C)作為覆蓋花梗后時間的函數的每個漿果的糖分。糖/漿果處理之間沒有發現顯著差異（組合擬合是二階多項式，實線）。(D)12天和20天后漿果的乙醇濃度，有（填充）和沒有（開放）硅脂覆蓋花梗。雙向方差分析（Tukey多重比較檢驗）在覆蓋后20 d顯示出顯著差異（P=0.036）。(E)作為時間函數的活組織百分比。覆蓋漿果的擬合線（虛線）非零（P的斜率=0.008）并且不同于未覆蓋漿果的擬合線（實線）的斜率（P=0.006）。(F)赤道半徑上的熒光信號（FDA染色，相對于最大值，高值=較高的活組織）在覆蓋后14天和18天針對漿果直徑的變化進行標準化。每個都顯示了局部加權散點圖平滑擬合(LOWESS)。覆蓋（虛線）與對照（實線）在兩個時間點都顯著不同（雙向方差分析，P<0.001）。數據是平均值±SE，n=3，除了(F)未顯示SE。
在成熟過程中用硅脂覆蓋漿果花梗對完整霞多麗簇的影響（2017年種植室，空心方塊=對照，實心圓圈=覆蓋）。(A)[O2]在漿果的近似中心軸上作為覆蓋花梗后時間的函數。雙向方差分析顯示覆蓋花梗減少了[O2](P<0.0001)。(B)覆蓋花梗后漿果的總可溶性固體(TSS)濃度隨時間的變化。與對照漿果相比，花梗覆蓋的漿果在實驗過程中顯示出顯著更高的TSS（雙向方差分析P=0.003；擬合為二階多項式，實線=對照，虛線=覆蓋）。(C)作為覆蓋花梗后時間的函數的每個漿果的糖分。糖/漿果處理之間沒有發現顯著差異（組合擬合是二階多項式，實線）。(D)12天和20天后漿果的乙醇濃度，有（填充）和沒有（開放）硅脂覆蓋花梗。雙向ANOVA（Tukey多重比較檢驗）在覆蓋后20 d顯示出顯著差異（P=0.036）。(E)作為時間函數的活組織百分比。覆蓋漿果的擬合線（虛線）的斜率不為零（P=0.008），并且不同于未覆蓋漿果的擬合線（實線）的斜率（P=0.006）。(F)赤道半徑上的熒光信號（FDA染色，相對于最大值，高值=較高的活組織）在覆蓋后14天和18天針對漿果直徑的變化進行標準化。每個都顯示了局部加權散點圖平滑擬合(LOWESS)。覆蓋（虛線）與對照（實線）在兩個時間點都顯著不同（雙向方差分析，P<0.001）。數據是平均值±SE，n=3，除了(F)未顯示SE。
顯微CT顯示的葡萄漿果內的空氣空間
使用微CT，霞多麗漿果在成熟過程中的兩個時間點的內部氣隙，其中漿果內氣隙的總體積大于500個體素（1.5×10–3 mm 3），如圖所示10。對于轉色后（98 DAA，顯色性突出了漿果內的空氣空間圖10A）和收獲后（154 DAA，，圖10B）漿果。空氣空間與轉色后漿果的花梗相連，但在收獲后漿果中不明顯。很明顯，室內有更大的空氣空間。漿果近端區域和種子種臍之間的孔隙率、孔隙和通道在兩天采樣的漿果之間沒有差異（補充圖S3）。
圖10
X射線顯微CT確定的霞多麗漿果中的空氣空間。(A)在98 DAA(19.3°Brix)和(B)在154 DAA(24.5°Brix)在2015-2016季節。圖像已被處理以指示漿果輪廓。最小體素截止值為500。框輪廓上的白點間隔1毫米。
X射線顯微CT確定的霞多麗漿果中的空氣空間。(A)在98 DAA(19.3°Brix)和(B)在154 DAA(24.5°Brix)在2015-2016季節。圖像已被處理以指示漿果輪廓。最小體素截止值為500。框輪廓上的白點間隔1毫米。
